IPTG/X-Gal即用型溶液

產(chǎn)品簡介：

藍白斑篩選是重組子篩選的一種方法。現(xiàn)在使用的許多載體都帶有一個大腸桿菌的DNA的短區(qū)段，其中有β-半乳糖苷酶基因（lacZ）的調(diào)控序列和前146個氨基酸的編碼信息。在這個編碼區(qū)中插入了一個多克隆位點（MCS），它并不破壞閱讀框，但可使少數(shù)幾個氨基酸插入到β-半乳糖苷酶的氨基端而不影響功能，這種載體適用于可編碼β-半乳糖苷酶C端部分序列的宿主細(xì)胞。因此，宿主和質(zhì)粒編碼的片段雖都沒有酶活性，但它們同時存在時，可形成具有酶學(xué)活性的蛋白質(zhì)。這樣，lacZ基因在缺少近操縱基因區(qū)段的宿主細(xì)胞與帶有完整近操縱基因區(qū)段的質(zhì)粒之間實現(xiàn)了互補，稱為α-互補。由α-互補而產(chǎn)生的LacZ⁺細(xì)菌在誘導(dǎo)劑IPTG的作用下，在生色底物X-Gal存在時產(chǎn)生藍色菌落，因而易于識別。然而，當(dāng)外源DNA插入到質(zhì)粒的多克隆位點后，幾乎不可避免地導(dǎo)致無α-互補能力的氨基端片段，使得帶有重組質(zhì)粒的細(xì)菌形成白色菌落。這種重組子的篩選，又稱為藍白斑篩選。如用藍白斑篩選則經(jīng)連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化的鈣化菌平板37℃倒置培養(yǎng)12-16h后，含有插入片段重組質(zhì)粒的細(xì)菌形成白色菌落，而沒有插入片段的質(zhì)粒細(xì)菌形成藍色菌落。

配制方法：

50mg/ml IPTG  5 ml：取250 mg IPTG，溶于5 ml無菌水中，過濾除菌后-20℃貯存。

20mg/ml X-Gal  5 ml：取100 mg X-gal，溶于5 ml 二甲基甲酰胺（DMF），棕色瓶中-20℃貯存。此試劑無需滅菌。

實驗程序：

1、轉(zhuǎn)化平板的制備：

向鋪好的含有相應(yīng)抗生素的固體瓊脂平板表面加入16 μl的IPTG(50 mg/ml)、40 μl的X-gal (20 mg/ml)，使用無菌的彎頭玻璃棒將其均勻的涂開，盡量使溶解X-gal的二甲基甲酰胺揮發(fā)干凈。

2、轉(zhuǎn)化

（1）取部分連接產(chǎn)物加到50-100 μl感受態(tài)細(xì)胞中（感受態(tài)細(xì)胞應(yīng)剛從-70℃冰箱取出放于冰浴上，待剛剛解凍時加入連接產(chǎn)物，連接產(chǎn)物的加入量不超過感受態(tài)細(xì)胞體積的十分之一），輕彈混勻，冰浴30分鐘。

（2）將離心管置于精確42℃水浴90秒，取出管后立即置于冰浴中放置2-3分鐘，其間不

要搖動離心管。

（3）向離心管中加入250-500 μl 37℃預(yù)熱的SOC或LB(不含抗生素)培養(yǎng)基，150rpm，37℃振蕩培養(yǎng)45分鐘。此步目的是使質(zhì)粒上相關(guān)的抗性標(biāo)記基因表達，使菌體復(fù)蘇。

（4）將離心管中的菌液混勻，吸取100 μl加到含相應(yīng)抗生素的SOB或LB固體瓊脂培養(yǎng)基上，用無菌的彎頭玻棒輕輕的將細(xì)胞均勻涂開。待平板表面干燥后，倒置平板，37℃培養(yǎng)12-16小時。

3、檢測

將得到的白色菌落接種1-5 ml LB培養(yǎng)基，37℃搖床振蕩培養(yǎng)過夜，保存菌種后提取質(zhì)粒，應(yīng)用PCR或酶切方法鑒定插入片段是否正確。

注意事項：

為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

保存條件：

-20℃保存，一年有效。